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原代細(xì)胞的分離和制作

[2015/9/15]

  人或動(dòng)物體內(nèi)(或胚胎組織)由于多種細(xì)胞結(jié)合緊密,不利于各個(gè)細(xì)胞在體外培養(yǎng)中生長(zhǎng)繁殖,即使采用1mm3的組織塊,也只有少量處于周邊的細(xì)胞可能生存和生長(zhǎng),若需獲取大量細(xì)胞,必須將現(xiàn)有的組織塊充分散開(kāi),使細(xì)胞解離出來(lái),常采用的方法如下:

  一、懸浮細(xì)胞的分離方法組織材料若來(lái)自血液、羊水、胸水或腹水的懸液材料,最簡(jiǎn)單的方法是采用1000r/min的低速離心10分鐘,若懸液量大,可適當(dāng)延長(zhǎng)離心時(shí)間,但速度不能太高,延時(shí)也不能太長(zhǎng),以避免擠壓或機(jī)械損傷細(xì)胞,離心沉淀用無(wú)鈣、鎂PBS洗兩次,用培養(yǎng)基洗一次后,調(diào)整適當(dāng)細(xì)胞濃度后再分瓶培養(yǎng),若選用懸液中某些細(xì)胞,常采用離心后的細(xì)胞分層液,因?yàn),?jīng)離心后由于各種細(xì)胞的比重不同可在分層液中形成不同層,這樣可根據(jù)需要收獲目的細(xì)胞。

  二、實(shí)體組織材料的分離方法對(duì)于實(shí)體組織材料,由于細(xì)胞間結(jié)合緊密,為了使組織中的細(xì)胞充分分散,形成細(xì)胞懸液,可采用機(jī)械分散法(物理裂解)和消化分離法。

  (一)機(jī)械分散法所取材料若纖維成分很少,如腦組織,部分胚胎組織可采用剪刀剪切、用吸管吹打分散組織細(xì)胞或?qū)⒁殉浞旨羲榉稚⒌慕M織放在注射器內(nèi)(用九號(hào)針),使細(xì)胞通過(guò)針頭壓出,或在不銹鋼紗網(wǎng)內(nèi)用鈍物壓擠(常用注射器鈍端)使細(xì)胞從網(wǎng)孔中壓擠出。此法分離細(xì)胞雖然簡(jiǎn)便、快速,但對(duì)組織機(jī)械損傷大,而且細(xì)胞分散效果差。此法僅適用于處理纖維成分少的軟組織。

  (二)消化分離法組織消化法是把組織剪切成較小團(tuán)塊(或糊狀),應(yīng)用酶的生化作用和非酶的化學(xué)作用進(jìn)一步使細(xì)胞間的橋連結(jié)構(gòu)松動(dòng),使團(tuán)塊膨松,由塊狀變成絮狀,此時(shí)再采用機(jī)械法,用吸管吹打分散或電磁攪拌或在搖珠瓶中振蕩,使細(xì)胞團(tuán)塊得以較充分的分散,制成少量細(xì)胞群團(tuán)和大量單個(gè)細(xì)胞的細(xì)胞懸液,接種培養(yǎng)后,細(xì)胞容易貼壁生長(zhǎng)。

  1、酶消化分離法酶消化分離法常采用胰蛋白酶和膠原酶,其分離方法如下:

  1)胰蛋白酶分散技術(shù)胰蛋白酶(簡(jiǎn)稱(chēng)胰酶)是廣泛應(yīng)用的消化劑。胰蛋白酶是一種胰臟制品,對(duì)蛋白質(zhì)有水介作用,主要作用于賴(lài)氨酸或精氨酸相連接的肽鍵,使細(xì)胞間質(zhì)中的蛋白質(zhì)水介而使細(xì)胞分散開(kāi),在常用的蛋白酶中由于產(chǎn)品的活力和純度不同,對(duì)細(xì)胞的消化能力也不同,胰蛋白酶對(duì)細(xì)胞的作用,取決于細(xì)胞類(lèi)型、酶的活力、配制的濃度、消化的溫度、無(wú)機(jī)鹽離子、pH以及消化時(shí)間的長(zhǎng)短等。 

   ①細(xì)胞類(lèi)型胰蛋白酶適于消化細(xì)胞間質(zhì)較少的軟組織,能有效地分離肝、腎、甲狀腺、羊膜、胚胎組織、上皮組織等。而對(duì)含結(jié)締組織較豐富的組織,如 乳腺、滑膜、子宮、纖維肉瘤、腫瘤組織等就無(wú)效,但若與膠原酶合用,就能增加其對(duì)組織的分離作用。

   ②酶的活力市售的胰蛋白酶,其活力都經(jīng)過(guò)測(cè)定而有效,但配制時(shí)必須新鮮,需保存在低溫冰箱中,消化時(shí)的pH和溫度都要適宜,否則會(huì)影響活力,細(xì)胞的分散直接與酶的活力有關(guān),最終使用活力為1200125056pH8.0時(shí)活力最強(qiáng)。該酶為粉劑,保藏時(shí)要防潮,室內(nèi)溫度不宜過(guò)高,保存時(shí)間不能太長(zhǎng),若粉劑結(jié)團(tuán)塊,說(shuō)明該部分受潮或失效。 

  ③酶的濃度胰蛋白酶一般采用的濃度為0.1%-0.25%(活力12001250,但遇到難消化的組織時(shí),濃度可適當(dāng)提高,消化時(shí)間適當(dāng)延長(zhǎng)。濃度高對(duì)細(xì)胞有毒性,而較低濃度的胰蛋白酶在培養(yǎng)液中可促進(jìn)細(xì)胞的增殖,若培養(yǎng)液中加入血清,其少量胰蛋白酶可被血清中抗胰蛋白酶因子所清除。  

  ④溫度一般認(rèn)為胰蛋白酶在56℃時(shí)活性最強(qiáng),但由于對(duì)細(xì)胞有損害而不能被采用,常使用的溫度為37℃,通常在37℃進(jìn)行消化比室溫作用快。  

  pHpH8~pH9是胰蛋白酶活力適宜范圍,但隨堿性的增加其活力也隨之減少,活性強(qiáng)分散快,細(xì)胞也容易被消化下來(lái),消化分離細(xì)胞時(shí)PH只能選用7.68.0之間,否則對(duì)細(xì)胞有損傷。  

  ⑥無(wú)機(jī)鹽離子若用含有鈣和鎂的鹽類(lèi)溶液來(lái)配制胰蛋白酶時(shí),可以發(fā)生抑制胰蛋白的消化作用。因此在配制時(shí)應(yīng)采用無(wú)鈣鎂離子的PBS配制。

  ⑦消化時(shí)間如果細(xì)胞消化時(shí)間過(guò)長(zhǎng),可以損害細(xì)胞的呼吸酶,從而影響細(xì)胞的代謝,一般消化時(shí)間為20分鐘為宜,冷消化時(shí)使用低濃度消化液,于4℃也可。 

  分離方法如下:將取得的組織用Hanks液洗三次,剪成碎塊大小為4毫米左右,用Hanks液洗2~3次以除去血球和脂肪組織,再加入0.25%的胰蛋白酶,搖勻后放4℃,次日再用Hanks液洗滌,棄去上清,共洗2~3次,然后,加入少量營(yíng)養(yǎng)液吹打分散,細(xì)胞計(jì)數(shù),按適當(dāng)?shù)臐舛确制颗囵B(yǎng)。 

  多次提取消化法有以下三種:

  熱消化多次提取將剪碎的細(xì)胞塊加入0.25%胰蛋白酶37℃水浴中消化15~20分鐘,然后經(jīng)洗滌后用營(yíng)養(yǎng)液分散制成細(xì)胞懸液,按合適的濃度分瓶培養(yǎng),然后將留下的未徹底消化的組織按上述方法操作,再消化提取細(xì)胞。  

  冷消化多次提取方法同上,只是消化溫度為4℃。  

  先熱消化后冷消化將組織塊先用胰蛋白酶于37℃下消化20分鐘經(jīng)洗滌后用營(yíng)養(yǎng)液分散,制成懸液,剩余未消化的小組織塊經(jīng)洗滌后用胰酶于4℃下,次日再提取細(xì)胞,分散成懸液,分瓶培養(yǎng)。

  2)膠原酶(Collagenase)消化法膠原酶是一種從細(xì)菌中提取出來(lái)的酶,對(duì)膠原有很強(qiáng)的消化作用。適于消化纖維性組織、上皮組織以及癌組織,它對(duì)細(xì)胞間質(zhì)有較好的消化作用,對(duì)細(xì)胞本身影響不大,可使細(xì)胞與膠原成分脫離而不受傷害。該酶分離效果好,即使有鈣、鎂離子存在仍有活性,故可用PBS和含血清的培養(yǎng)液配制,即操作簡(jiǎn)便又可提高細(xì)胞成活率,最終濃度200u/mL0.10.3mg/mL。此酶消化作用緩和,無(wú)需機(jī)械振蕩,但膠原酶價(jià)格較高,大量使用將增加實(shí)驗(yàn)成本。  

  經(jīng)過(guò)膠原酶消化后的上皮組織,由于上皮細(xì)胞對(duì)酶有耐受性,可能有一些上皮細(xì)胞團(tuán)塊尚未被完全消化開(kāi)。成小團(tuán)塊的上皮細(xì)胞比分散的單個(gè)上皮細(xì)胞更易生長(zhǎng),因此不必要再進(jìn)一步消化處理。   鑒于胰蛋白酶和膠原酶的生物學(xué)活性和在不同濃度下消化各種組織小塊所需的時(shí)間(小時(shí))有差異,以及兩者價(jià)格不等,有人采用膠原酶與胰蛋白酶并用,同時(shí)還可加透明質(zhì)酸酶(對(duì)細(xì)胞表面糖基有作用),采用兩者的聯(lián)合消化作用,對(duì)分散大鼠和兔肝、癌組織非常有效。

  除上述兩種最常用的消化酶外,還有鏈霉蛋白酶、粘蛋白酶、蝸牛酶、彈性蛋白酶、木瓜蛋白酶,近年來(lái),還有一種從灰霉菌中提取的Pronase新酶分散細(xì)胞更佳。

  2、非酶消化法(EDTA消化法)EDTA是一種非酶消化物,又稱(chēng)螯合劑或Versene,全名為乙烯二胺四乙酸。常用不含鈣、鎂離子的PBS配成0.02%的工作液,對(duì)一些組織,尤其是上皮組織分散效果好,該化學(xué)物質(zhì)能與細(xì)胞上的鈣、鎂離子結(jié)合形成螯合物,利用結(jié)合后的機(jī)械力使細(xì)胞變圓而分散細(xì)胞或使貼壁細(xì)胞從瓶壁上脫離,缺點(diǎn)是細(xì)胞易裂解或貼壁細(xì)胞從瓶壁上脫離時(shí)呈片狀,有團(tuán)塊,常不單獨(dú)使用,但可與胰蛋白酶混合使用(1121),不僅利于細(xì)胞脫壁又利于細(xì)胞分散,可降低胰酶的用量和毒性作用。 

  消化分離法的操作步驟:  

  1)剪切把組織塊剪碎,呈1~5mm3大小的組織塊。  

  2)加液漂洗將碎組織塊在平皿(或三角燒瓶)中用無(wú)鈣鎂PBS2-3次(采用傾斜,自然沉降法)。 

  3)消化加入消化液(胰蛋白酶或膠原酶或EDTA)于37℃水浴中作用適當(dāng)時(shí)間(中間可輕搖1~2次),若組織塊膨松呈絮狀可終止,若變化不大可更換一次消化液,繼續(xù)消化直至膨松絮狀為止。胰蛋白酶消化時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng)。

  4)棄去消化液采用傾斜自然沉降或低速離心法盡量棄去消化液。  

  5)漂洗將含有鈣、鎂離子的培養(yǎng)基沿瓶壁緩緩加入,中止消化反應(yīng),采用漂洗法洗2-3次后,加入完全培養(yǎng)基。  

  6)機(jī)械分散采用吸管吹打或振蕩法,使細(xì)胞充分散開(kāi)后用紗網(wǎng)或3~4層無(wú)菌紗布過(guò)濾后分瓶培養(yǎng),若要求不高可采用傾斜自然沉降5~10分鐘,吸上層細(xì)胞懸液進(jìn)行分瓶培養(yǎng)。

  注意事項(xiàng)如下:  

  1)組織塊必須漂洗2~3次以除去組織中的鈣、鎂離子和血清對(duì)胰蛋白酶和EDTA的抑制作用。

  2)胰蛋白濃度不宜過(guò)高,作用時(shí)間不能太長(zhǎng),以避免毒性作用。  

  3)消化后組織不僅要盡量棄去消化液,以避免毒性產(chǎn)生,而且動(dòng)作要輕,以避免膨松的細(xì)胞隨漂洗而丟失。


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